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*法 DNA探針雜交法
供試品中的外源性DNA經變性為單鏈后吸附于固相膜上，在一定溫度下可與相匹配的單鏈DNA復性而重新結合成為雙鏈DNA，稱為雜交。將特異性單鏈DNA探針標記后，與吸附在固相膜上的供試品單鏈DNA雜交，并使用與標記物相應的顯示系統顯示雜交結果，與已知含量的陽性DNA對照比對后，可測定供試品中外源性DNA的含量。
試劑（1）DNA標記和檢測試劑盒 （2）DNA雜交膜尼龍膜或硝酸纖維素膜。
（3）2%蛋白酶K溶液 稱取蛋白酶K 0.20g，溶于滅菌水10ml中，分裝后儲藏于-20℃備用。
（4）3%牛血清白蛋白溶液 稱取牛血清白蛋白0.30g，溶于滅菌水10ml中。 （5）1mol/L三羥甲基氨基甲烷（Tris）溶液（pH8.0） 用鹽酸調pH值至8.0。 （6）5.0mol/L氯化鈉溶液
（7）0.5mol/L乙二胺四乙酸二鈉溶液（pH8.0） 用10mol/L 氫氧化鈉溶液調節pH至8.0。
（8）20%十二烷基硫酸鈉(SDS)溶液 用鹽酸調pH至7.2。
（9）蛋白酶緩沖液（pH8.0） 量取1mol/L Tris溶液1.0ml（pH8.0），5mol/L 氯化鈉溶液2.0ml，0.5mol/L乙二胺四乙酸二鈉溶液(pH8.0）2.0ml，20%SDS溶液 2.5 ml， 加滅菌水至10ml。
（10）TE緩沖液（pH8.0） 量取1mol/L Tris溶液（pH8.0）10ml，0.5mol/L乙二胺四乙酸二鈉溶液（pH8.0）2ml，加滅菌水至1000ml。
（11）1%魚精DNA溶液 精密稱取魚精DNA 0.10g，置10ml量瓶中，用TE緩沖液溶解并稀釋至刻度， 搖勻，用7號針頭反復抽打以剪切DNA成為小分子，分裝后貯藏于-20℃備用。
（12）DNA稀釋液 取1%魚精DNA溶液50μl，加TE緩沖液至10ml。
用于探針標記和陽性對照的DNA制備 用于探針標記和陽性對照的DNA，由生產供試品用的傳代細胞、工程菌或雜交瘤細胞提取純化獲得，其提純和鑒定可參考下述推薦方案進行，具體方法可參考《分子克隆實驗指南》（［美］J.薩姆布魯克等著，黃培堂等譯，科學出版社，2002）或《精編分子生物學實驗指南》（［美］F.奧斯伯等著，顏子穎、王海林譯，科學出版社，1998）。
將待提取的細胞基質懸液的細胞濃度調整為每1ml含107個細胞，如果為細菌，則將其濃度調整為每1ml含108個細胞細菌。取懸液1ml，離心，在沉淀中加裂解液400μl混勻，37℃作用12～24小時后，加入飽和酚溶液450μl，劇烈混合，以每分鐘10000轉離心10分鐘，轉移上層液體，以飽和酚溶液450μl重復抽提一次；轉移上層液體，加入三氯jia烷450μl，劇烈混勻，以每分鐘10000轉離心10分鐘；轉移上層液體，加入pH 5.2的3mol/L醋酸鈉溶液40μl，充分混合，再加入-20℃以下的無水乙醇1ml，充分混合，-20℃以下作用2小時，以每分鐘15000轉離心15分鐘；用適量-20℃70％乙醇溶液洗滌沉淀1次，以每分鐘15000轉離心15分鐘，棄上清液，保留沉淀，吹至干燥后，加適量滅菌TE緩沖液溶解，RNase酶切，酚/三氯jia烷抽提，分子篩純化DNA，即得。
用1%瓊脂糖凝膠電泳法和分光光度法鑒定陽性對照品的DNA純度：應無RNA和寡核苷酸存在；A260/A280比值應在1.8～2.0之間（測定時將供試品稀釋至A260為0.2～1.0）。
用于陽性對照和標記探針的DNA在使用前應進行酶切或超聲波處理，使其片斷大小適合于DNA雜交和探針標記。
陽性對照品的DNA濃度根據下式計算
DNA濃度（ng/μl）= 50×A260
陽性對照品可分裝于適宜的小管中，-20℃以下保存，長期使用。 探針的標記 按試劑盒使用說明書進行。
測定法 （1）蛋白酶 K預處理 按下表對供試品、陽性和陰性對照進行加樣，混合后37℃保溫4小時以上，以保證酶切反應*。
注意事項：供試品的稀釋
根據成品zui大使用劑量，用DNA稀釋液將供試品（原液）稀釋至每100μl 含1人份劑量；如成品zui大使用劑量較大，而供試品的蛋白含量較低，可用DNA稀釋液將供試品稀釋至每100μl 含1/10人份劑量或每100μl含1/100人份劑量。
D1、D2、D3為稀釋的陽性DNA對照。用DNA稀釋液稀釋至每1ml中含DNA 1000ng。然后依次10倍稀釋成10ng/100μl (D1)、1ng/100μl (D2)、100pg/100μl (D3)三個稀釋度；如成品使用劑量較大，而且DNA*（100pg/劑量）較嚴格時，則需要提高DNA檢測靈敏度，相應的陽性DNA對照應稀釋成100pg /100μl (D1)、10pg /100μl (D2)、1pg/100μl (D3)三個稀釋度。陰性對照為DNA稀釋液，空白對照為未進行蛋白酶 K預處理的TE緩沖液。
當供試品1/100人份劑量大于100μl時，終體積也隨之增大，一般終體積為供試品體積的一倍左右，供試品體積和終體積相差過小，可能會影響蛋白酶 K的活性。
2％蛋白酶 K溶液和蛋白酶緩沖液的比例為1/20，蛋白酶緩沖液和終體積的比例為1/10。
加入3％牛血清白蛋白溶液適量，是為了使陽性對照和陰性對照中含有一定的蛋白質與供試品（通常為蛋白質）的酶切條件保持一致；如供試品為其他物質，則應改用其他相應物質。
若預處理后的供試品溶液中的蛋白質干擾本試驗，可用上述飽和酚溶液抽提法或其他適宜方法提取供試品DNA（陽性對照、陰性對照也應再次提取DNA，與供試品溶液平行）。 （2）點膜 用TE緩沖液浸潤雜交膜后，將預處理的供試品、陽性對照、陰性對照與空白對照置100℃水浴加熱10分鐘，迅速冰浴冷卻，以每分鐘8000轉離心5秒。用抽濾加樣器點樣于雜交膜(因有蛋白質沉淀，故要視沉淀多少確定加樣量，以避免加入蛋白質沉淀。所有供試品與陽性對照、陰性對照、空白對照加樣體積應一致，或按同樣比例加樣)。晾干后置80℃真空干烤1小時以上。
（3）雜交及顯色 按試劑盒使用說明書進行。
結果判定 陽性對照應顯色，其顏色深度與DNA含量相對應，呈一定的顏色梯度；陰性、空白對照應不顯色，或顯色深度小于陽性DNA對照D3，試驗成立。將供試品與陽性對照進行比較，根據顯色的深淺判定供試品中外源性DNA的含量。
第二法 熒光染色法（新增）
PicoGreen是一種高靈敏度雙鏈DNA熒光染料。該染料與雙鏈DNA特異結合形成復合物，在波長480 nm激發下產生*熒光信號，可用熒光酶標儀在波長520 nm處進行檢測，在一定的DNA濃度范圍內以及在該熒光染料過量的情況下，熒光強度與DNA濃度成正比，根據供試品的熒光強度，計算供試品中的DNA殘留量。
試劑 （1）20×TE緩沖液（200 mM Tris-HCl，20 mM EDTA，pH7.5） 加滅菌水配置成1×TE。
（2） PicoGreen染料 用1×TE緩沖液將PicoGreen染料稀釋200倍，應現用現配，并注意避光。
（3） DNA標準品 取DNA標準品適量溶于TE中，制成100 μg/ml DNA標準品，于-20℃條件下保存。
標準品溶液的制備 用1×TE緩沖液將DNA標準品配成0ng/ml、1.25ng/ml、2.5ng/ml、5.0ng/ml、10ng/ml、20ng/ml、40ng/ml、80 ng/ml的標準品溶液。
測定法 精密量取標準品溶液和供試品溶液各400錯誤！未找到引用源。l于1.5ml 離心管中，分別加入稀釋后的PicoGreen染料400 錯誤！未找到引用源。l，混勻后，避光室溫放置5 分鐘。取250錯誤！未找到引用源。l上述反應液于96孔板黑色酶標板中，并做3個復孔。用熒光酶標儀于激發波長480nm、發射波長520nm處測定熒光強度。以1×TE緩沖液測得的熒光強度為本底，測定和記錄各測定孔的熒光值。 用標準品溶液的濃度（ng/ml）對其相應的熒光強度作直線回歸（相關系數應不低于？），將供試品溶液的熒光強度代入回歸方程，求出供試品的殘余DNA含量（ng/ml）。
注意事項 （1）該法DNA檢出限為0.3 ng/ml。DNA含量在1.25-80 ng/mL范圍線性較好，因此供試品DNA含量在該范圍內可定量測定；當DNA含量低于1.25 ng/mL時應為*，表示為小于1.25 ng/mL。
（2）若供試品對回收率和精密度無干擾，則可直接測定。
（3）若精密度好，但供試品輕微干擾回收率時，無需對供試品DNA做進一步純化，可直接測定，但每次測定均應增加回收率實驗，并用回收率對測定結果進行校正。
（4）若供試品嚴重干擾回收率和精密度時，應采用適宜方法（參見本項目*法）純化DNA以排除干擾，直至精密度和回收率試驗均符合要求。需要純化DNA后再進行測定的供試品，每次測定均應從純化步驟起增加回收率實驗，并用回收率對測定結果進行校正。
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